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一個(gè)抗體做IHC染色,如果不出效果,可能是哪些因素造成的?

更新時(shí)間:2025-10-16      點(diǎn)擊次數(shù):892

一個(gè)抗體在免疫組化(IHC)實(shí)驗(yàn)中不出效果(即無信號或信號弱)是一個(gè)非常常見的問題。這通常是由一整套復(fù)雜的因素共同導(dǎo)致的,需要進(jìn)行系統(tǒng)性的排查。


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以下是可能導(dǎo)致IHC染色失敗的常見原因,可以按照這個(gè)思路進(jìn)行排查: 

一、 樣本相關(guān)問題

1.  固定不當(dāng):

●固定不及時(shí):組織離體后未及時(shí)固定,導(dǎo)致抗原降解(內(nèi)部蛋白酶分解)或彌散。

●固定時(shí)間過長或過短:

- 過短:固定不充分,抗原保存不佳。

- 過長:過度交聯(lián)會遮蔽抗原表位,尤其是甲醛固定,導(dǎo)致抗原無法被抗體識別。這種情況非常常見。

●固定劑不匹配:常用的是10%中性福爾林,但某些特定抗原可能需要特殊的固定液(如丙酮、乙醇等)。

2.  包埋與切片:

●烤片溫度過高或時(shí)間過長:會破壞抗原。

●切片厚度:切片太厚可能導(dǎo)致抗體滲透不佳,背景加深;太薄可能導(dǎo)致目標(biāo)抗原量不足。

3.  內(nèi)源性干擾物質(zhì):

●內(nèi)源性過氧化物酶:在肝臟、腎臟等富含血細(xì)胞的組織中,未全部滅活的內(nèi)源性過氧化物酶會導(dǎo)致背景染色,掩蓋特異性信號。

●內(nèi)源性生物素:在某些組織(如肝、腎、腦)中含量高,如果使用生物素檢測系統(tǒng),會產(chǎn)生嚴(yán)重的非特異性背景。

4.  抗原修復(fù)不當(dāng)(這是最常見的原因之一)

●未進(jìn)行抗原修復(fù):對于福爾林固定石蠟包埋的組織,絕大多數(shù)抗原都被交聯(lián)遮蔽,必須進(jìn)行抗原修復(fù)。

●修復(fù)方法選擇錯誤:

- 熱修復(fù)法:包括高壓法、微波法、水浴法。適用于大多數(shù)抗原。

- 酶修復(fù)法:如胰蛋白酶、胃蛋白酶。適用于特定抗原。

- 選擇錯誤的修復(fù)方法或修復(fù)液(如該用EDTA修復(fù)液卻用了枸櫞酸鹽修復(fù)液)可能導(dǎo)致修復(fù)效果不佳。

●修復(fù)條件不佳:修復(fù)時(shí)間、溫度、pH值不準(zhǔn)確。修復(fù)不足會導(dǎo)致信號弱;修復(fù)過度可能導(dǎo)致背景染色或組織脫片。


 二、 抗體相關(guān)問題

1.  抗體選擇不當(dāng):

●抗體特異性:抗體并非為其應(yīng)用(IHC)而驗(yàn)證。務(wù)必查閱說明書,確認(rèn)該抗體已驗(yàn)證可用于IHC,特別是您所用的物種和組織類型(如:人、小鼠、大鼠;石蠟切片/冰凍切片)。

●抗體克隆號:不同克隆號識別同一蛋白的不同表位,其IHC效果可能差異巨大。

2.  抗體保存與使用:

●抗體失效:抗體反復(fù)凍融、存放溫度不當(dāng)或超過有效期導(dǎo)致失活。

●稀釋度不當(dāng):

- 濃度過低:信號弱或無信號。

- 濃度過高:可能導(dǎo)致非特異性結(jié)合,背景高,信噪比差。

●孵育條件:孵育時(shí)間不足或溫度過低,抗體未能充分與抗原結(jié)合。


 三、 實(shí)驗(yàn)操作與試劑問題

1.  檢測系統(tǒng)問題:

●檢測試劑盒失效:HRP或AP酶失活,或顯色底物失效(例如DAB/AEC沉淀)。

●系統(tǒng)不匹配:使用了一抗種屬不匹配的二抗(如兔來源的一抗用了抗小鼠的二抗)。

●步驟遺漏或錯誤:例如忘了加二抗,或忘了加顯色底物。

2.  封閉問題:

●封閉不充分:導(dǎo)致非特異性背景高,可能掩蓋弱陽性信號。

●封閉劑選擇不當(dāng):常用5% BSA或與二抗同源的非免疫血清。如果使用生物素系統(tǒng),需要額外進(jìn)行內(nèi)源性生物素封閉。

3.  洗滌問題:

●洗滌不充分:殘留的抗體或試劑會導(dǎo)致高背景。

●洗滌過度:可能會洗掉特異性結(jié)合的一抗/二抗。

4.  顯色與復(fù)染:

●顯色時(shí)間過短:信號未充分顯現(xiàn)。

●顯色時(shí)間過長:背景過高,甚至出現(xiàn)假陽性。

●復(fù)染過深:掩蓋了弱陽性信號。


 四、 對照設(shè)置問題

沒有設(shè)置正確的對照,就無法判斷問題是出在樣本、抗體還是操作上。

●陽性對照:使用已知表達(dá)該靶抗原的組織。如果陽性對照也無染色,說明整個(gè)實(shí)驗(yàn)系統(tǒng)有問題。

●陰性對照:

- 空白對照:只用PBS或抗體稀釋液代替一抗。如果此對照有染色,說明存在非特異性背景。

- 同型對照:使用與一抗同種屬、同亞型的無關(guān)免疫球蛋白。用于排除抗體的Fc段非特異性結(jié)合。


五、系統(tǒng)性排查建議(故障排除流程)

當(dāng)遇到無信號時(shí),建議按以下步驟排查:

1.  確認(rèn)陽性對照:您的陽性對照組織染色是否正常?

●是 → 問題很可能在您的“待測樣本"本身(抗原不表達(dá)或含量極低)或“樣本處理"(固定、包埋)上。

●否 → 問題出在“實(shí)驗(yàn)流程或試劑"上。

2.  檢查陰性對照:您的陰性對照(無一抗)是否有染色?

●是 → 存在“高背景"。檢查:內(nèi)源性酶是否全部滅活?封閉是否充分?抗體濃度是否過高?洗滌是否充分?

●否 → 背景干凈,但無信號,進(jìn)入下一步。

3.  回顧實(shí)驗(yàn)流程:

●抗原修復(fù):這是石蠟切片的首要排查點(diǎn)。嘗試更換修復(fù)方法(如從枸櫞酸鹽換為EDTA)或優(yōu)化修復(fù)條件(時(shí)間、溫度)。

●抗體:重新查閱說明書,確認(rèn)稀釋比、孵育時(shí)間和條件。使用更新鮮的抗體或新批次抗體進(jìn)行測試。

●檢測系統(tǒng):確認(rèn)所有試劑(特別是二抗和DAB)均在有效期內(nèi),且正確配制。嘗試使用敏感性更高的檢測系統(tǒng)(如聚合物法)。

4.  最終驗(yàn)證:

●如果條件允許,可以使用“Western Blot"驗(yàn)證該樣本中是否存在目標(biāo)蛋白。

●嘗試使用另一種“已驗(yàn)證有效的、不同克隆號"的抗體來檢測同一靶點(diǎn)。


六、總結(jié)

總之,IHC是一個(gè)多步驟的復(fù)雜實(shí)驗(yàn),需要精細(xì)的操作和系統(tǒng)性的優(yōu)化。從樣本處理開始,每一步都可能成為成敗的關(guān)鍵。


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