支原體去除試劑：

細(xì)胞培養(yǎng)（特別是傳代細(xì)胞）被支原體污染是個(gè)世界性問題。國(guó)內(nèi)外研究表明，95％以上是以下四種支原體：口腔支原體（M.orale）、精氨酸支原體（M.arginini）、豬鼻支原體（M.hyorhinis）和萊氏無膽甾原體（A.laidlawii），為牛源性。以上是zui常見的污染細(xì)胞培養(yǎng)的支原體菌群，但能夠污染細(xì)胞的支原體種類是很多的，國(guó)外調(diào)查證明，大約有二十多種支原體能污染細(xì)胞，有的細(xì)胞株可以同時(shí)污染兩種以上的支原體。
支原體污染的來源包括工作環(huán)境的污染、操作者本身的污染（一些支原體在人體是正常菌群）、培養(yǎng)基的污染、污染支原體的細(xì)胞造成的交叉污染、實(shí)驗(yàn)器材帶來的污染和用來制備細(xì)胞的原始組織或器官的污染。
組織細(xì)胞培養(yǎng)工作中，主要從以下幾個(gè)方面來預(yù)防支原體的污染：控制環(huán)境污染；嚴(yán)格實(shí)驗(yàn)操作；細(xì)胞培養(yǎng)基和器材要保證無菌；在細(xì)胞培養(yǎng)基中加入適量的抗生素。支原體污染細(xì)胞后，特別是重要的細(xì)胞株，有必要清除支原體，常用方法有抗生素處理、抗血清處理、抗生素加抗血清和補(bǔ)體聯(lián)合處理。支原體zui突出的結(jié)構(gòu)特征是沒有細(xì)胞壁，一般來講，對(duì)作用于細(xì)胞壁生物合成的抗生素，如 -內(nèi)酰胺類、萬古霉素等*不敏感；對(duì)多粘菌素（polymycin）、利福平、磺胺藥物普遍耐藥。對(duì)支原體zui有抑制活性及常用于支原體感染治療的抗生素是四環(huán)素類、大環(huán)內(nèi)酯類及一些氟喹諾酮；其他類抗生素如氨基糖苷類、氯霉素對(duì)支原體有較小抑制作用，所以常不用來作為支原體感染的化學(xué)治療劑。

支原體是一種大小介于細(xì)菌和病毒之間（zui小直徑0.2um）并獨(dú)立生活的微生物。約有1%可通過濾菌器。支原體無細(xì)胞壁形態(tài)呈高度多形性。可為圓形、絲狀或梨形。

支原體形態(tài)多變，在光境下不易看清內(nèi)部結(jié)構(gòu)。電鏡下觀察支原體膜為三層結(jié)構(gòu)。其中央有電干密度大的密集顆粒群或絲狀的中心束。支原體多吸附或散在于細(xì)胞表面和細(xì)胞之間。橫斷面與細(xì)胞微絨毛相似，但微絨毛電子密度比支原體小，且中央無顆粒群或中央束。

支原體代謝需固醇類物質(zhì)、部分種類需要精氨酸、O₂或葡萄糖，每一種支原體都有自身持點(diǎn)。多數(shù)支原體適合于偏堿條件下生存（PH7.6—8.0），對(duì)酸耐受性差。對(duì)熱比較敏感，對(duì)一般抗生素不敏感。

支原體污染細(xì)胞后。培養(yǎng)液可不發(fā)生混濁。多數(shù)情況下細(xì)胞病理變化輕微或不顯著，細(xì)微變化也可由于傳代、換液而緩解。因此易被忽視。但個(gè)別嚴(yán)重者，可致細(xì)胞增殖緩慢。甚至從培養(yǎng)器皿脫落。

為確定有無支原體污染可做如下檢測(cè)：

①相差顯微境檢測(cè)：將細(xì)胞按種于事先放置于培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)的蓋玻片上，24h后取出，用相差油鏡觀察。支原體呈暗色微小顆粒位于細(xì)胞表面和細(xì)胞之間。

②熒光染色法：熒光染色用能與DNA特異性結(jié)合的熒光染料Hoechst 33258，可使支原體內(nèi)含有的DNA著色，染色后用熒光顯微鏡觀察。具體方法如下：首先將細(xì)胞接種蓋玻片上，在細(xì)胞未長(zhǎng)滿前取出玻片，用不合酚紅的Hanks液漂洗一下，用l： 3醋酸甲酵固定10Min，然后用生理鹽水漂洗。置于用生理鹽水配濃度為50pg／ml的Hoechst 33258中染色10min。染色后用蒸溜水洗1—2min。向細(xì)胞面滴加pH5.5磷酸緩沖液數(shù)滴，然后置熒光顯微鏡下觀察。鏡下支原體為散在于細(xì)胞同圍或附于細(xì)胞膜表面的亮綠色小點(diǎn)。

③電鏡檢查；用掃描電鏡方法簡(jiǎn)便快速。也可以利用透射電鏡。

④DNA分子條文檢查或支原體培養(yǎng)等方法：檢出率高。但方法較為復(fù)雜

支原體是一類缺乏細(xì)胞壁的原核細(xì)胞型微生物，大小一般在0.3-0.5um之間，呈高度多形性，有球形、桿形、絲狀、分枝狀等多種形態(tài)。它不同于細(xì)胞，也不同于病毒。支原體用普通染色法不易著色，用姬姆薩染色很淺，革蘭染色為陰性。支原體可在雞胚絨毛尿囊膜上或細(xì)胞培養(yǎng)中生長(zhǎng)，營(yíng)養(yǎng)要求比細(xì)菌高。

細(xì)胞培養(yǎng)（特別是傳代細(xì)胞）被支原體污染是個(gè)世界性問題。在細(xì)胞培養(yǎng)中支原體感染發(fā)生率達(dá)到63%，支原體感染發(fā)生后能改變細(xì)胞的DNA,RNA及蛋白表達(dá)，又不能通過可視法對(duì)其進(jìn)行檢測(cè)，而且它對(duì)細(xì)胞的生長(zhǎng)率影響較小，不易引起注意。國(guó)內(nèi)外研究表明，95％以上是以下四種支原體：口腔支原體（M.orale）、精氨酸支原體（M.arginini）、豬鼻支原體（M.hyorhinis）和萊氏無膽甾原體（A.laidlawii），為牛源性。以上是zui常見的污染細(xì)胞培養(yǎng)的支原體菌群，但能夠污染細(xì)胞的支原體種類是很多的，國(guó)外調(diào)查證明，大約有二十多種支原體能污染細(xì)胞，有的細(xì)胞株可以同時(shí)污染兩種以上的支原體。
支原體污染的來源包括工作環(huán)境的污染、操作者本身的污染（一些支原體在人體是正常菌群）、培養(yǎng)基的污染、污染支原體的細(xì)胞造成的交叉污染、實(shí)驗(yàn)器材帶來的污染和用來制備細(xì)胞的原始組織或器官的污染。

組織細(xì)胞培養(yǎng)工作中，主要從以下幾個(gè)方面來預(yù)防支原體的污染：控制環(huán)境污染；嚴(yán)格實(shí)驗(yàn)操作；細(xì)胞培養(yǎng)基和器材要保證無菌；在細(xì)胞培養(yǎng)基中加入適量的抗生素。支原體污染細(xì)胞后，特別是重要的細(xì)胞株，有必要清除支原體，常用方法有抗生素處理、抗血清處理、抗生素加抗血清和補(bǔ)體聯(lián)合處理。支原體zui突出的結(jié)構(gòu)特征是沒有細(xì)胞壁，一般來講，對(duì)作用于細(xì)胞壁生物合成的抗生素，如 -內(nèi)酰胺類、萬古霉素等*不敏感；對(duì)多粘菌素（polymycin）、利福平、磺胺藥物普遍耐藥。對(duì)支原體zui有抑制活性及常用于支原體感染治療的抗生素是四環(huán)素類、大環(huán)內(nèi)酯類及一些氟喹諾酮；其他類抗生素如氨基糖苷類、氯霉素對(duì)支原體有較小抑制作用，所以常不用來作為支原體感染的化學(xué)治療劑。InvivoGen公司研究開發(fā)的新一代支原體抗生素M-Plasmocin能有效地殺滅支原體，不影響細(xì)胞本身的代謝，并且用M-Plasmocin處理過的培養(yǎng)細(xì)胞，不會(huì)重新感染支原體。

紅霉素有效，而且不影響細(xì)胞生長(zhǎng)。網(wǎng)友“smilewf”經(jīng)驗(yàn)是細(xì)胞剛開始被支原體污染，細(xì)胞生長(zhǎng)極為緩慢，而且狀態(tài)不好，細(xì)胞之間及底部總有一些亮晶晶的顆粒狀物質(zhì)，換液后好些，但過2天又會(huì)增多，培養(yǎng)液清亮，嚴(yán)重時(shí)象一層細(xì)沙鋪在瓶底。剛開始以為是消化過頭引起的細(xì)胞的碎片和細(xì)胞內(nèi)的顆粒，后來發(fā)現(xiàn)與胰酶消化無關(guān)。使用紅霉素（就在醫(yī)院的門診購(gòu)買，很便宜）后這種現(xiàn)象明顯好轉(zhuǎn)，背景干凈，細(xì)胞生長(zhǎng)很快，狀態(tài)明顯好轉(zhuǎn)，但好像紅霉素不能**支原體感染，停藥后一段時(shí)間可以復(fù)發(fā)，但如果細(xì)胞很重要有沒有多余的細(xì)胞時(shí)可以考慮一試，我用后覺得效果不錯(cuò)。

網(wǎng)友“zllxash”的經(jīng)驗(yàn)：支原體是細(xì)胞培養(yǎng)中zui常見的，干擾實(shí)驗(yàn)結(jié)果的一種污染。但由于不易被察覺，有些污染的細(xì)胞仍在繼續(xù)使用。據(jù)查，目前各實(shí)驗(yàn)室使用的二倍體細(xì)胞和傳代細(xì)胞中約有11%的細(xì)胞受到支原體污染。因此，對(duì)支原體污染應(yīng)嚴(yán)加防范。

用卡那霉素預(yù)防支原體污染有效。

檢測(cè)方法：

1、相差顯微鏡檢測(cè)；2、低張?zhí)幚淼匾录t染色觀察； 3、DNA熒光染色法；4、電鏡檢測(cè)；5、3-H胸腺嘧啶摻入法； 6、聚合酶鏈反映法； 7、免疫學(xué)方法； 8 、支原體的培養(yǎng)。

對(duì)于支原體污染的細(xì)胞，可以采取補(bǔ)救措施：

1、抗生素排除法：可以用5-10倍于常用量的沖擊法，加入高濃度抗生素后作用24-48小時(shí)，再換入常規(guī)培養(yǎng)液，有時(shí)可能有效。推薦用量：慶大霉素 200ug/ml ,四環(huán)素10ug/ml ，卡那霉素50ug/ml 。對(duì)于支原體污染抗生素應(yīng)用，預(yù)防性應(yīng)用比污染后使用好。

2、 加溫除菌：根據(jù)支原體耐熱性能差的特點(diǎn)。將受支原體污染的細(xì)胞置于41度中作用5-10小時(shí)可以殺滅支原體。但由于41度對(duì)培養(yǎng)細(xì)胞本身也有較大的影響，故處理前，應(yīng)先進(jìn)行預(yù)試驗(yàn)，確定出zui大限度殺傷支原體而對(duì)細(xì)胞影響較小的處理時(shí)間。

支原體菌株來源：M.Arginini ATCC23838 精氨酸支原體,M.FermentaneATCC19989發(fā)酵支原體 ,M.SalivariumATCC23064唾液支原體 ,M.HominisATCC23114人型支原體 ,M.OraleATCC23714口腔支原體 ,M.HyorhinisATCC29052豬鼻支原體。其共同引物序列來自16s和23s保守區(qū)域，外部引物為Ｆ1 5′-ＡＣＡＣＣＡＴＧＧＧＡＧＣＴＧＧＴＡＡＴ-3′，Ｒ1 5′-ＧＴＴＣＡＴＣＧＡＣＴＴＴＣＡＧＡＣＣＣＡＡＧＧＣＡＴ-3′；內(nèi)部引物為 Ｆ2 5′-ＧＴＴＣＴＴＴＧＡＡＡＡＣＴＧＡＡＴ-3′，Ｒ2 5′-ＧＣＡＴＣＣＡＣＣＡＡＡＡＡＣＴＣＴ-3′。

ＰＣＲ反應(yīng)體系和條件：10×緩沖液（10ｍＭＴｒｉｓ-ＨＣｌ、500ｍＭＫＣｌ、20ｍＭＭｇＣｌ2、0.01%明膠）、ＰｒｉｍｅｒＦ1、Ｒ1、Ｆ2、Ｒ2的濃度為2ｎｍｏｌ/μＬ、2.5ｍＭｄ ＮＴＰｓ、Ｔａｑ酶、Ｈ2Ｏ、石蠟油覆蓋。反應(yīng)溫度和時(shí)間為:94℃/2ｍｉｎ預(yù)變性、94℃/30ｓ變性、55℃/1ｍｉｎ退火、72℃/1ｍｉｎ延伸,循環(huán)30次后72℃延伸5ｍｉｎ。第1次ＰＣＲ反應(yīng)取模板10μＬ,第2次ＰＣＲ反應(yīng)以第1次ＰＣＲ擴(kuò)增產(chǎn)物為模板取1μＬ。

一種名為BM-Cyclin的化學(xué)試劑，除體外培養(yǎng)癌細(xì)胞中支原體污染具體方法：

1、選用抗支原體藥物（BM-Cyclin-1、2 ），磷酸緩沖液配制，溶液抽濾除菌，0～4℃保存。

2、細(xì)胞處理過程：細(xì)胞傳代同時(shí)加BM-Cyclin-1 10μg/ml，37℃培養(yǎng)3天；胰蛋白酶消化、傳代，加入BM-Cyclin-2 5μg/ml，37℃培養(yǎng)3天；繼續(xù)傳代追加BM-Cyclin-2 5μg/ml一次，培養(yǎng)2～4天（如細(xì)胞污染嚴(yán)重可重復(fù)上述處理過程）棄藥液，D-Hank’s液洗2次，胰蛋白酶消化傳代，進(jìn)行常規(guī)培養(yǎng)。

3 、在細(xì)胞檢測(cè)或?qū)嶒?yàn)前，再用常用量的5倍慶大霉素或卡那霉素作短時(shí)間處理，每天30～60分鐘。

支原體的污染是目前細(xì)胞實(shí)驗(yàn)室比較普遍存在的問題，用藥物來殺滅支原體雖是一種重要措施，畢竟是一種補(bǔ)救方法，而且清除后，支原體仍可重新污染細(xì)胞。

因此，重要的還在于預(yù)防，如嚴(yán)格選用無支原體污染的牛血清，保持細(xì)胞培養(yǎng)間潔凈和嚴(yán)格無菌操作等。

網(wǎng)友“arlbor”把從網(wǎng)上和書上看到的一些資料與大家討論一下吧:

細(xì)胞株若受到細(xì)菌、真菌、支原體、或是特定病毒等之污染時(shí)，會(huì)嚴(yán)重的影響實(shí)驗(yàn)的結(jié)果。而細(xì)菌、真菌等之微生物污染時(shí)，較易自培養(yǎng)基等的外觀變化察覺。但是若受到支原體之污染時(shí)，細(xì)胞之外觀較無明顯變化，但是其污染會(huì)造成細(xì)胞之生長(zhǎng)速率緩慢、細(xì)胞產(chǎn)生病變之型態(tài)改變等等變化。

各國(guó)細(xì)胞庫(kù)支原體污染的統(tǒng)計(jì)表，如下：
 

造成支原體高污染率的原因?yàn)椋?/strong>
　　1、支原體size 0.1~0.8 um，無細(xì)胞壁，可透過一般過濾膜（0.22-0.45 um）
　　2、支原體污染時(shí)，沒有明顯的肉眼或一般光學(xué)顯微鏡可觀察到的特征變化
　　3、過去缺乏簡(jiǎn)單、快速且可靠的檢測(cè)方式
　　4、細(xì)胞流通間缺乏品管，造成實(shí)驗(yàn)室間的相互污染
　　5、研究或操作人員忽略污染問題

而支原體污染了來源：
　　1、已受污染的細(xì)胞
　　2、操作人員的疏失
　　3、已受污染的培養(yǎng)基、血清
　　4、操作環(huán)境不良、實(shí)驗(yàn)器具不潔等

由于支原體為人體口腔中之正常菌叢，實(shí)驗(yàn)室之操作人員的污染亦可能為污染源，須十分注意。而萬一細(xì)胞已受支原體污染時(shí)，*的處理原則為將細(xì)胞高壓滅菌后丟棄，以免污染其它潔凈的細(xì)胞株。但是若是堅(jiān)持要作去除支原體污染，有以下幾種方法，只不過結(jié)果會(huì)與原始的細(xì)胞特性有差異。

去除支原體污染：
　　1、抗生素處理：BM-cyclin（Roche），MRA（mycoplasma removal agent，ICN），Ciprofloxcin（Bayer），Enrofloxacin（Bayer）
　　2、Nucleic acid metabolites：5-bromouracil，Hoechst 33258，bromodeoxyuridine
　　3、Anti-sera

預(yù)防與控制方面可從以下各點(diǎn)加強(qiáng)注意：
　　G 設(shè)備方面：
　　1、使用已作支原體測(cè)試ok之細(xì)胞株
　　2、于另一隔離之區(qū)域操作未知是否有支原體污染之細(xì)胞
　　3、使用不添加抗生素的培養(yǎng)基培養(yǎng)細(xì)胞
　　G 檢測(cè)方面：定期以標(biāo)準(zhǔn)的支原體檢測(cè)方法檢測(cè)細(xì)胞、培養(yǎng)基、血清、ddH₂O有否被支原體污染。G 實(shí)驗(yàn)操作人員之無菌觀念與無菌操作技術(shù)之要求。

有關(guān)支原體污染之問題與回答：

1. 應(yīng)如何避免細(xì)胞污染？
　　細(xì)胞污染的種類可分成細(xì)菌、酵母菌、霉菌、病毒和支原體。 主要的污染原因?yàn)闊o菌操作技術(shù)不當(dāng)、操作室環(huán)境不佳、污染之血清和污染之細(xì)胞等。 嚴(yán)格之無菌操作技術(shù)、清潔的環(huán)境、與品質(zhì)良好之細(xì)胞來源和培養(yǎng)基配制是減低污染之方法。

2. 如果細(xì)胞發(fā)生微生物污染時(shí)， 應(yīng)如何處理？
　　直接滅菌后丟棄之

3. 支原體 （mycoplasma） 污染的細(xì)胞， 是否能以肉眼觀察出異狀？
　　不能。 除極有經(jīng)驗(yàn)之專家外， 大多數(shù)遭受支原體污染的細(xì)胞株， 無法以其外觀分辨之。

4. 支原體污染會(huì)對(duì)細(xì)胞培養(yǎng)有何影響？
　　支原體污染幾乎可影響所有細(xì)胞之生長(zhǎng)參數(shù)，代謝及研究之任一數(shù)據(jù)。故進(jìn)行實(shí)驗(yàn)前，必須確認(rèn)細(xì)胞為 mycoplasma-free，實(shí)驗(yàn)結(jié)果之?dāng)?shù)據(jù)方有意義。

5. 偵測(cè)出細(xì)胞株有支原體污染時(shí)， 該如何處理？
　　直接滅菌后丟棄，以避免污染其它細(xì)胞株。

支原體之檢測(cè)：

一、直接培養(yǎng)法
　　·  原理：直接培養(yǎng)支原體于培養(yǎng)基中，觀察其生長(zhǎng)及菌落生成。
　　·  特點(diǎn)：是目前zui直接與靈敏之步驟，亦是用來評(píng)估其它偵測(cè)新步驟之標(biāo)準(zhǔn)步驟。
　　·  缺點(diǎn)：培養(yǎng)時(shí)間長(zhǎng)，須3－5星期才能判斷。有些支原體不能在培養(yǎng)基培養(yǎng)出來 （例如M. hyorhinis）。需同時(shí)培養(yǎng)支原體株作為正反應(yīng)對(duì)照組，可能會(huì)造成污染。
　　·  材枓：dextrose、L-arginine HCl、Difco PPLO broth （Difco 0554-17-1） horse serum、15% yeast extract solution （autoclaved）、Bacto agar、無菌有蓋螺旋試管（autoclaved）、無菌培養(yǎng)皿﹙60x15mm﹚、L-玻棒、37℃培養(yǎng)箱、厭氧缸（厭氧缸長(zhǎng)期培養(yǎng)易有污染，所以厭氧包應(yīng)用無菌水，每次打開厭氧缸后，用70% ethanol擦拭內(nèi)壁。）
　　·  培養(yǎng)基制備：基本配方為Difco PPLO broth（60%）, 馬血清（20%）, 15% yeast extreat solution （10%）, 10x stock solution （10%）。由于培養(yǎng)時(shí)間長(zhǎng)，可加入penicillin（50u/ml）至10x stock solution或加入thallium acetate （1：2000）至培養(yǎng)基中以防止其它細(xì)菌污染。
　　·  10x stock solution （1 liter） ：稱取50 g dextrose，10 g L-arginine HCl，溶于1 liter蒸餾水中。以0.22μm無菌過濾膜過濾滅菌。分裝100 ml至瓶中，保存于 -70℃。
　　·  液體培養(yǎng)基 （1 liter） ：稱取21 g之Difco PPLO broth，0.02 g phenol red 于600ml蒸餾水中，加熱攪拌溶解之。滅菌121℃，15分鐘。待溫度降低至室溫后，于無菌操作臺(tái)內(nèi)加入200ml馬血清，100ml之15% yeast extract solution，及100ml解涷之10x stock solution，混合均勻后，分裝至已滅菌之有蓋螺旋試管中，10ml/管。保存于4℃，期限1個(gè)月。
　　·  固體培養(yǎng)基 （1 liter ）：稱取21 g之Difco PPLO broth，0.02 g phenol red，15g Bacto agar于600ml蒸餾水中，加熱溶解之。滅菌121℃，15分鐘。放在50℃水中浴中，待溫度降低至50℃時(shí)，于無菌操作臺(tái)內(nèi)加入200ml馬血清，100ml之15% yeast extract solution 及100ml解凍之10x stock solution，混合均勻后，倒入60x50㎜之無菌培養(yǎng)皿中，5ml/培養(yǎng)皿。保存于4℃，期限1個(gè)月。

步驟：
　　·  取1 ml細(xì)胞培養(yǎng)液或0.2ml細(xì)胞懸浮液，接種于液體培養(yǎng)基中，置于37℃培養(yǎng)二周，觀察是否有混濁或是pH值改變之情形。培養(yǎng)一周及二周后，分別取0.1 ml液體培養(yǎng)液涂在agar plate上，將其倒放置于37℃厭氧箱培養(yǎng)，培養(yǎng)至少3星期，持續(xù)觀察是否有支原體之菌落出現(xiàn)。
　　·  另取1 ml細(xì)胞培養(yǎng)液或0.2ml細(xì)胞懸浮液，涂抹在agar plate上，37℃厭氧培養(yǎng)3星期，持續(xù)觀察是否支原體菌落出現(xiàn)。
　　·  另作正負(fù)反應(yīng)對(duì)照組，正反應(yīng)對(duì)照組為Acholeplasma laidlawii （ATCC 23206） 與M. arginini （ATCC 23838）。負(fù)反應(yīng)對(duì)照組為待測(cè)細(xì)胞之新鮮培養(yǎng)基。

結(jié)果判讀：
　　·  支原體生長(zhǎng)較慢，所以先在液體培養(yǎng)基培養(yǎng)1~2周增殖后，再培養(yǎng)于agar plate上。需至少培養(yǎng)3星期后，才可斷定是否有支原體污染。所以整個(gè)測(cè)試需5個(gè)星期才知正確結(jié)果。
　　·  典型之支原體菌落類似荷包蛋（fried- egg like），乃是由于支原體往agar下層生長(zhǎng)所致，為圓形無色透明菌落，大小約10-55μm。但是并非所有的支原體皆為似荷包蛋菌落，有些是圓形菌落或是類似粘菌類形態(tài)（slime）。
　　·  若要區(qū)分細(xì)胞或是氣泡造成的類似菌落，可將其自agar plate上切下，重新培養(yǎng)于液體培養(yǎng)基中，培養(yǎng)一星期后再種入agar plate，若是細(xì)胞則不會(huì)生長(zhǎng)。

DNA螢光染色法

·  原理︰利用螢光染劑（bisbenzimide, Hoechst 33258）偵測(cè)支原體污染。此染劑會(huì)結(jié)合到DNA之Adenosine-Thymidine （A-T） rich區(qū)域，因?yàn)橹гw之DNA中A-T含量占多數(shù)（55～80%），所以可將其染色而偵測(cè)。被支原體污染之細(xì)胞經(jīng)染色后，在細(xì)胞核外與細(xì)胞周圍可看到許多大小均一之螢光小點(diǎn)，即為支原體之DNA，證明有支原體之污染。

·  測(cè)試步驟用間接步驟，將待測(cè)細(xì)胞懸浮液或細(xì)胞培養(yǎng)液接種于指示細(xì)胞培養(yǎng)液中（indicator cell，例如Vero cell or 3T6 cell），然后培養(yǎng)指示細(xì)胞再作螢光染色。正負(fù)反應(yīng)對(duì)照組亦可以接種于indicator cell內(nèi)作為對(duì)照。

·  待測(cè)細(xì)胞亦可作直接測(cè)試，但需為吸附型細(xì)胞，培養(yǎng)后直接作螢光染色。有些細(xì)胞易有螢光背景，而干擾結(jié)果判讀，則建議使用接種于指示細(xì)胞之步驟。

·  特點(diǎn)︰簡(jiǎn)單、經(jīng)濟(jì)與靈敏，廣泛使用，可作為例行之偵測(cè)步驟。可以偵測(cè)不易培養(yǎng)之支原體，例如M. hyorhinis，較直接培養(yǎng)法快，約一星期即可知道結(jié)果。

·  缺點(diǎn)：有時(shí)仍會(huì)有螢光背景，影響判讀。

材料︰

·  Hanks’ balanced salt solution without NaHCO3 or phenol red （HBSS, GibcoBRL 21250-014﹚、bisbenzimide （Hoechst No.33258, Sigma B-2883）、thimerosol （Sigma T-5125）、0.1M citric acid、02M disodium phosphate、glycerol、glacial acetic acid、methanol、strerile H2O、chamber slide （Nunc 177380）或chamber slide替代物：35 or 60mm sterile plate內(nèi)放置無菌22x22mm蓋玻片﹙浸于酒精內(nèi)，使用前過火滅菌﹚，一般吸附型細(xì)胞均能吸附在蓋玻片上。染色后取出蓋玻片，細(xì)胞面朝下放在玻片上觀察。

·  Indicator cells: Vero （African green monkey kidney, ATCC CCL-81 or CCRC 60013） or 3T6（mouse fibroblast, ATCC CCL-96 or CCRC 60070），細(xì)胞須先測(cè)試無污染。αMEM with 10%FBS （ medium for Vero cell）

配制試劑:

·  無菌HBSS︰配制Hanks’ balanced salt solution，以0.22mm無菌過濾膜過濾滅菌。勿用高壓蒸汽滅菌。
　　·  Hoechst 33258 stock solution（100X）︰稱取5.0 mg bisbenzimide和10.0 mg thimersol溶于100 ml無菌HBSS，置于棕色瓶中，室溫下以電磁攪拌器攪拌30分鐘至*溶解后，以1ml分裝至1.5ml小離心管中，貯存于-20℃。
　　·  Hoechst 33258 working reagent︰取1 ml Hoechst 33258 stock solution，加入sterile 100 ml HBSS中，室溫下攪拌45分鐘，置于棕色瓶中并以鋁箔紙包覆，避免光照，貯存于4℃。
　　·  mounting solution︰22.2 ml 0.1 M citric acid和27.8 ml 0.2 M Na2HPO4加入于50 ml glycerol中混合，以1 N NaOH調(diào)整pH至5.5（pH很重要），貯存于4℃。
　　·  固定溶液（fixative）︰冰醋酸與甲醇以1︰3之體積比例混合，使用前才配制。
步驟：
　　·  培養(yǎng)Vero細(xì)胞： Vero細(xì)胞可作長(zhǎng)期培養(yǎng)或制作多個(gè)冷凍保存管，測(cè)試前解凍培養(yǎng)。測(cè)試前一周培養(yǎng)Vero細(xì)胞。
　　·  在接種測(cè)試樣品前一日，以trypsin-EDTA溶液處理Vero細(xì)胞，制成細(xì)胞懸浮液，以1~2x10^4 cells／ml培養(yǎng)于chamber slide中，每個(gè)well加入1ml細(xì)胞懸浮液，于37℃, 5％CO2培養(yǎng)。隔日確定生長(zhǎng)良好后，即可接種測(cè)試樣品。
　　·  接種測(cè)試樣品：樣品種類：1ml待測(cè)之培養(yǎng)基，1ml待測(cè)細(xì)胞培養(yǎng)液（可將細(xì)胞稍微刮下﹚，0.05~0.1ml冷凍管之細(xì)胞懸浮液。
　　·  將測(cè)試樣品加入chamber slide內(nèi)，培養(yǎng)5天后，進(jìn)行Hoechst 33258的螢光染色觀察。
　　·  以Acholeplasma laidlawii ATCC 23206 感染Vero細(xì)胞作為正反應(yīng)對(duì)照組﹙或是已感染支原體之細(xì)胞培養(yǎng)液或冷凍細(xì)胞液﹚，負(fù)反應(yīng)對(duì)照組為Vero cell之新鮮培養(yǎng)基（ αMEM +10%FBS）。
DNA螢光染色檢測(cè)︰
　　·  取出培養(yǎng)5日之Vero細(xì)胞，吸除培養(yǎng)液。于每個(gè)well中加入2 ml 1:3混合的冰醋酸/甲醇固定液，靜置10 min后，吸除固定液。重復(fù)上述之步驟，風(fēng)干10分鐘。
　　·  于每個(gè)well中，加入1 ml Hoechst 33258 working solution，室溫下靜置30 min。
　　·  吸掉Hoechst 33258染液后，以無菌水洗滌3次，風(fēng)干后加入1滴的mounting solution，并以蓋玻片覆蓋之。
　　·  以100x-400x螢光顯微鏡觀察。打開水銀光源10 min后，以UV激發(fā)光束（330～380 nm）之濾光鏡，觀察細(xì)胞核外是否有藍(lán)色螢光小點(diǎn)或是絲狀點(diǎn)之螢光物產(chǎn)生。

結(jié)果判讀：

若有支原體污染，在Vero細(xì)胞核外與細(xì)胞表面會(huì)出現(xiàn)藍(lán)色螢光小點(diǎn)或是絲狀點(diǎn)。其形狀一致，與細(xì)胞殘片染成之不規(guī)則點(diǎn)狀物不同。其螢光可維持?jǐn)?shù)星期。

圖例 （A）為negative result : 螢光顯微鏡下，只觀察到Vero細(xì)胞的細(xì)胞核，測(cè)試樣品沒有支原體的污染。（為positive result : 在Vero細(xì)胞核外與細(xì)胞表面會(huì)出現(xiàn)藍(lán)色螢光小點(diǎn)和絲狀點(diǎn)，表示測(cè)試樣品有支原體的污染。

Positive Result 在Vero細(xì)胞核外與細(xì)胞表面會(huì)出現(xiàn)藍(lán)色螢光小點(diǎn)和絲狀點(diǎn)，表示測(cè)試樣品有支原體的污染。

污染測(cè)試--支原體 :

PCR方法原理：

利用具特殊專一性之primers，經(jīng)由PCR反應(yīng)來復(fù)制mycoplasma DNA。所用之primers來自mycoplasma之conserved 16S-23S rRNA序列，由于此段spacer之序列依m(xù)ycoplsma種類不同而不同，因此可依所復(fù)制之DNA大小及其restriction fragment大小差異來作偵測(cè)與鑒定。

特點(diǎn)：靈敏（e.g. 0.1~1.6 CFU / 5 ul sample） 與快速（一天）。可偵測(cè)不易培養(yǎng)之mycoplasma （e.g. M. hyorhinis）。不需培養(yǎng)mycoplasma作為正反應(yīng)對(duì)照組，避免可能之污染。

缺點(diǎn)︰PCR反應(yīng)很靈敏，易有偽陽(yáng)性結(jié)果。此方法尚在評(píng)估中，故結(jié)果僅作為參考和內(nèi)部品管之一部份。

材料與設(shè)備：

ATCC mycoplasma detection kit:可作50～100 reactions.
　　提供1st stage primer mixture與2nd stage primer mixture
　　positive control DNA （A. laidlawii ; M. pirum）
　　PCR reagents :
　　Taq polymerase （ 5 U / ul ）
　　dNTP（ dGTP, dCTP, dTTP, dATP, 1.25 mM each ）
　　10x PCR buffer （with 1.5mM MgCl2）
　　25mM MgCl2
　　sterile ddH2O
　　Machine / Equipment：
　　PCR thermal cycler
　　agarose電泳設(shè)備
　　DNA電泳膠體觀察設(shè)備
　　無菌PCR反應(yīng)管
　　無菌1.5 ml微量離心管
　　無菌2ul, 20ul, 200ul, 1000ul Tips/ Pipetmans

方法：

此PCR反應(yīng)是一種nested PCR，包括2階段PCR反應(yīng)，1st stage PCR結(jié)束后，取其反應(yīng)物作2nd stage PCR，然后取2nd PCR產(chǎn)物作agarose gel electrophoresis，依DNA band之有無及片段大小來分析結(jié)果。

結(jié)果：使用UV light觀察，并照相記錄。

方法：

此PCR反應(yīng)是一種nested PCR，包括2階段PCR反應(yīng)，1st stage PCR結(jié)束后，取其反應(yīng)物作2nd stage PCR，然后取2nd PCR產(chǎn)物作agarose gel electrophoresis，依DNA band之有無及片段大小來分析結(jié)果。

結(jié)果：使用UV light觀察，并照相記錄。

方法再詳盡點(diǎn):

3.1 1st stage PCR reaction（total volume 25 ul）：
　　3.1.1 測(cè)試樣品 （ 2 ul / each ）
　　3.1.1.1 直接取樣測(cè)試細(xì)胞之培養(yǎng)液。
　　3.1.1.2 Positive control : mycoplasma DNA （ A. laidlawii ; M. pirum ）
　　3.1.1.3 Negative control : ddH2O
　　3.1.2 Reaction mixture （ 23 ul / each ）
　　3.1.2.1 10x PCR buffer （含1.5 mM MgCl2 ） 2.5 ul
　　3.1.2.2 1st stage primer mixture 0.5 ul
　　3.1.2.3 dNTP （ 1.25 mM each ） 1.0 l
　　3.1.2.4 MgCl2 （ 25 mM ） 0.5 ul
　　3.1.2.5 Taq DNA polymerase （ 5 U/ul ） 0.1 ul
　　3.1.2.6 ddH2O 18.4 ul
　　3.1.3 PCR program （ 1st PCR與2 nd PCR相同）：使用PCR thermal cycler
　　3.1.3.1 step 1 : denaturation: 94 ℃ 30 sec
　　3.1.3.2 step 2 : denaturation: 94 ℃ 30 sec
　　3.1.3.3 step 3 : annealing: 55 ℃ 2 min
　　3.1.3.4 step 4 : extension: 72 ℃ 2 min
　　3.1.3.5 重復(fù)3.1.3.2至3.1.3.4步驟30 cycles
　　3.1.3.6 step 5 : final extension 72 ℃ 5 min
　　3.2 2 nd stage PCR reaction（total volume 25 ul）
　　3.2.1 測(cè)試樣品：1st stage PCR product（1 ul / each）。
　　3.2.2 Reaction mixture （ 24 ul / each ）
　　3.3.2.1 10x PCR buffer （含1.5 mM MgCl2 ） 2.5 ul
　　3.3.2.2 2 nd stage primer mixture 0.5 ul
　　3.3.2.3 dNTP （ 1.25 mM each ） 1.0 ul
　　3.3.2.4 MgCl2 （ 25 mM ） 0.5 ul
　　3.3.2.5 Taq DNA polymerase （ 5U/ul ） 0.1 ul
　　3.3.2.6 ddH2O 19.4 ul
　　3.2.3 PCR program同3.1.3；使用PCR thermal cycler

4.0 膠片電泳分析
　　4.1 膠片 （2.0%） 置備: 將2 g agarose溶于100 ml （ 1x ） TAE buffer。
　　4.2 電泳液：（1x） TAE buffer（Tris-acetate/EDTA electropheresis buffer）
　　4.3 選擇100~500 bp DNA size Marker：取100 bp ladder Marker 5 ul （ 25 ng/ul ）
　　4.4 取10 ul 2 nd stage PCR產(chǎn)物分析，各加入2 ul （ 6x ） loading dye。
　　4.5 進(jìn)行電泳分離100V, 25 min。
　　4.6 膠片染色：ethidium bromide染色10 min，H2O退染10mim。（EtBr為致癌物質(zhì)，請(qǐng)戴手套并小心操作）
　　4.7 結(jié)果：使用UV light觀察，并照相記錄。

Figure 1 : Agarose gel electrophoresis of the 2nd -stage PCR Products from eight commonly encountered Mycoplasma and A. laidlawii Species. （ from ATCC mycoplasma detection kit）

Table 1 : Variations of restriction fragment lengths of the 16S-23S rRNA intergenic spacer regions of commonly encountered species of mycoplasma. （from ATCC mycoplasma detection kit）
　　* No restriction site
　　** When a polyacrylamide gel is used for the resolution of amplified DNA products, a double-band product with one bp difference may be observed for M. hominis. This feature can serve as a good indicator for differentiated M. hominis from M. arginini, which only produces a single-band DNA product.

網(wǎng)友“zllxash”提供支原體污染的細(xì)胞在光學(xué)顯微鏡下的照片：如下

Protocol：Detection of Mycoplasma by Culture
　　1. Inoculate 2 agar plates with 0.1ml of test sample.
　　2. Inoculate 1 agar plate with 100cfu M. pneumoniae.
　　3. Inoculate 1 agar plate with 100cfu M. orale.
　　4. Leave 1 agar plate un-inoculated as a negative control.
　　5. Inoculate 1 broth with 0.2 ml of test sample.
　　6. Inoculate 1 broth with 100cfu M. pneumoniae.
　　7. Inoculate 1 broth with 100cfu M. orale.
　　8. Leave 1 agar plate un-inoculated as a negative control.
　　9. Incubate agar plates anaerobically for 14 days at 37°C using a gas jar with anaerobic gas
pak and catalyst.
　　10. Incubate broths aerobically for 14 days at 37°C.
　　11. Between 3 and 7 days and 10 and 14 days incubation, subculture 0.1 ml of test broth onto
an agar plate and incubate plate anaerobically as above.
　　12. Observe agar plates after 14 days incubation at x300 magnification using an inverted
microscope for the presence of mycoplasma colonies （see Figure 14）.

Criteria for a Valid Result
　　All positive control agar plates and broths show evidence of mycoplasma by typical colony
　　formation on agar plates and usually a colour change in broths.
　　All negative control agar plates and broths show no evidence of mycoplasma.

Criteria for a Positive Result
　　Test agar plates infected with mycoplasma show typical colony formation.

Criteria for a Negative Result
　　The test agar plates show no evidence of mycoplasma.

Notes
　　1. Mycoplasma colonies have a typical colony formation commonly described as “fried egg”
（See Figure 8） due to the opaque granular central zone of growth penetrating the agar
surrounded by a flat translucent peripheral zone on the surface. However in many cases
only the control zone will be visible.
　　2. Positive controls may be included at a concentration to give 100 colony-forming units.
These controls should obviously be handled in a laboratory remote from the main tissue
culture laboratory.
　　3. Control organisms （M. pneumoniae, and M. orale） are available from National Collection of
Type Cultures （UK）.
　　4. Mycoplasma pneumoniae is a potential pathogen and must be handled in a class II
microbiological safety cabinet operating to ACDP Category 2 Conditions.
　　5. This test procedure should be carried out in a microbiology laboratory away from the cell
culture laboratory.

All from<>------Sigma

原理：該法是通過PCR技術(shù)將支原體16srRNA基因特異性擴(kuò)增，來檢測(cè)培養(yǎng)細(xì)胞中污染的支原體。PCR引物選自16sr RNA基因上的支原體特異片段，此片段與其他細(xì)菌的序列無交叉性雜交反應(yīng)。擴(kuò)增產(chǎn)物用瓊脂糖凝膠電泳，經(jīng)溴乙啶（EB）染色后在紫外透射儀上進(jìn)行檢測(cè)。

1）  16sr DNA引物用水稀釋至40umol/L。
　　（1）.正向引物：5’-ACTCCTACGGGAGGCAGCAGTA-3’
　　（2）.反向引物：5’-TGCACCATCTGTCACTCTGTTAACCTC-3’

2）  PCR擴(kuò)增

（1）  在冰浴中對(duì)各樣品制備PCR重要混合物，對(duì)每個(gè)樣品均加入：
　　10X PCR緩沖液 5.0ml
　　25mmol/L dNTPs 混合物 0.4ul
　　40umol/L 16sr DNA引物 每種引物1.0ul
　　40umol/L pBR322 DNA 引物 每種 2.0ul
　　pBR322 DNA 1pg/ml 2.0ul
　　DNA聚合酶（5U/ml） 0.2ul
　　三蒸水 35.4ul
　　總量 45ul

（2）  用無菌去離子水稀釋樣品為1:10，1:100。

（3）  于每個(gè)eppendorf管中加45ul PCR擴(kuò)增混合物，每管中分別加入樣品原液及1:10，1:100稀釋液各5ul，操作均在冰浴中進(jìn)行。

（4）  在每個(gè)eppendorf管中輕輕加入50ul無菌礦物油，覆蓋在液面上。如DNA擴(kuò)增儀帶有有制式熱蓋，此步驟可省略。

（5）  將各管放入DNA擴(kuò)增儀的孔槽內(nèi)，并執(zhí)行以下循環(huán)指令：
　　①  950C 10min 一個(gè)循環(huán)
　　②  950C，30S→580C 1min→720C 1min, 共30個(gè)循環(huán)。
　　③  zui后720C 10min延長(zhǎng)循環(huán)。

網(wǎng)友bearina的意見：

在光鏡下，可以看到細(xì)胞膜上吸附很多圓點(diǎn)，40*16倍下約有0.1mm，分布多集中于細(xì)胞核周圍和細(xì)胞邊緣，中間部位較少。嚴(yán)重的整個(gè)細(xì)胞都可以看到。消化時(shí)可以看到它們從細(xì)胞膜上游離出來，很多，還會(huì)動(dòng)。培養(yǎng)基偏堿時(shí)會(huì)大量游離。感染后細(xì)胞生長(zhǎng)變慢，凋亡率增加，正常培養(yǎng)時(shí)也會(huì)出現(xiàn)死亡。我認(rèn)為是支原體污染造成的。建議培養(yǎng)細(xì)胞時(shí)，如發(fā)現(xiàn)細(xì)胞有異常，一定要高倍鏡下檢測(cè)。低倍鏡下一般看不出細(xì)胞的變化。

gaoyunhang認(rèn)為zui主要是支原體污染的發(fā)現(xiàn),如果發(fā)生支原體污染,細(xì)胞營(yíng)養(yǎng)液常常變黃,細(xì)胞生長(zhǎng)變緩,部分細(xì)胞發(fā)生脫落等等。

如果發(fā)生了支原體污染,除非的確是極為重要的細(xì)胞,zui保險(xiǎn)的方法是將被污染細(xì)胞扔掉。

所有的對(duì)支原體污染有效的藥物對(duì)細(xì)胞均有一定的毒副作用，建議不要采用。

細(xì)胞培養(yǎng)支原體感染

① 細(xì)胞培養(yǎng)（特別是傳代細(xì)胞）被支原體污染是個(gè)世界性問題。國(guó)內(nèi)外研究表明，95％以上是以下四種支原體：口腔支原體（M.orale）、精氨酸支原體（M.arginini）、豬鼻支原體（M.hyorhinis）和萊氏無膽甾原體（A.laidlawii），為牛源性。以上是zui常見的污染細(xì)胞培養(yǎng)的支原體菌群，但能夠污染細(xì)胞的支原體種類是很多的，國(guó)外調(diào)查證明，大約有二十多種支原體能污染細(xì)胞，有的細(xì)胞株可以同時(shí)污染兩種以上的支原體。

② 支原體污染的來源包括工作環(huán)境的污染、操作者本身的污染（一些支原體在人體是正常菌群）、培養(yǎng)基的污染、污染支原體的細(xì)胞造成的交叉污染、實(shí)驗(yàn)器材帶來的污染和用來制備細(xì)胞的原始組織或器官的污染。

③ 組織細(xì)胞培養(yǎng)工作中，主要從以下幾個(gè)方面來預(yù)防支原體的污染：控制環(huán)境污染；嚴(yán)格實(shí)驗(yàn)操作；細(xì)胞培養(yǎng)基和器材要保證無菌；在細(xì)胞培養(yǎng)基中加入適量的抗生素。支原體污染細(xì)胞后，特別是重要的細(xì)胞株，有必要清除支原體，常用方法有抗生素處理、抗血清處理、抗生素加抗血清和補(bǔ)體聯(lián)合處理。支原體zui突出的結(jié)構(gòu)特征是沒有細(xì)胞壁，一般來講，對(duì)作用于細(xì)胞壁生物合成的抗生素，如 -內(nèi)酰胺類、萬古霉素等*不敏感；對(duì)多粘菌素（polymycin）、利福平、磺胺藥物普遍耐藥。對(duì)支原體zui有抑制活性及常用于支原體感染治療的抗生素是四環(huán)素類、大環(huán)內(nèi)酯類及一些氟喹諾酮；其他類抗生素如氨基糖苷類、氯霉素對(duì)支原體有較小抑制作用，所以常不用來作為支原體感染的化學(xué)治療劑。InvivoGen公司研究開發(fā)的新一代支原體抗生素M-Plasmocin能有效地殺滅支原體，不影響細(xì)胞本身的代謝，并且用M-Plasmocin處理過的培養(yǎng)細(xì)胞，不會(huì)重新感染支原體。

1、支原體肺炎的藥是紅霉素和四環(huán)素（副作用多，已少用）。所以用紅霉素是有道理的。但是，由于耐藥菌的泛濫，紅霉素耐藥菌非常多，所以有人發(fā)現(xiàn)紅霉素?zé)o效（當(dāng)然可能根本不是支原體污染），要不可以試試四環(huán)素，用的人少，耐藥菌還是要少一些的，然而，紅霉素和四環(huán)素都是抑菌劑，所以不能斷根，這就是我下面要談的。

2、對(duì)支原體有效的殺菌劑還是氨基甙類，即使只有中度敏感。這里面就有一個(gè)問題，很多人又用慶大霉素又用卡那霉素，我不知道這是為什么？他為什么不再加上鏈霉素和妥布霉素？協(xié)同作用是由不同機(jī)制的藥物合用產(chǎn)生的，同一機(jī)制藥物的作用僅等同于增加其中某種藥物的劑量而已，有什么意義呢？所以我覺得用一種就夠了。慶大霉素不錯(cuò)，但耐藥菌也常見，所以有時(shí)可能還是沒效果。丁胺卡那是這類藥中較少產(chǎn)生耐藥性的，可以試試嗎？

3、談?wù)労嫌玫膯栴}。我推薦抑菌劑+殺菌劑：紅霉素/四環(huán)素+慶大霉素/丁胺卡那霉素，我個(gè)人認(rèn)為四環(huán)素+丁卡可能zui為有效，因?yàn)橄鄬?duì)而言，細(xì)菌對(duì)他們都教陌生、敏感。但是還不夠，請(qǐng)往下看。

4、誰都不敢保證這樣就萬事大吉了。里面有一小撮細(xì)菌可能還能頑強(qiáng)抗過去，它們的后代必將變異為耐藥菌。所以還應(yīng)該加點(diǎn)其他的措施，因?yàn)檫@些細(xì)菌量畢竟少，消化后的懸浮細(xì)胞離心一下，細(xì)胞畢竟比支原體重，是不是可以分離出來？多次稀釋細(xì)胞并離心是否可以很大程度的減少支原體的數(shù)量呢？當(dāng)然，前提是用了一到兩次抗生素細(xì)菌只有少量了。

5、再不行，復(fù)蘇吧。

　　我們實(shí)驗(yàn)室所有細(xì)胞都有支原體污染，而且從上個(gè)學(xué)期以來越來越嚴(yán)重了。本來上個(gè)學(xué)期細(xì)胞生長(zhǎng)還比較快，而實(shí)驗(yàn)室負(fù)責(zé)細(xì)胞房管理和復(fù)蘇細(xì)胞、配培基的老師看了以后也總說沒關(guān)系，因此一直沒在這事上下工夫，細(xì)胞長(zhǎng)得太糟我就用D-Hanks洗兩次，然后用酶消化后用滅菌的離心管洗細(xì)胞、1000rpm離心，三次，同時(shí)用D-Hanks洗兩次培養(yǎng)瓶，重新貼壁，似乎也有一點(diǎn)點(diǎn)效果。但這個(gè)學(xué)期要用的幾種細(xì)胞中有的過了兩個(gè)星期也長(zhǎng)不起來，長(zhǎng)起來的細(xì)胞周圍也有很多沙子樣的小黑點(diǎn)，全實(shí)驗(yàn)室所有養(yǎng)了細(xì)胞的都說自己的細(xì)胞長(zhǎng)得差，負(fù)責(zé)細(xì)胞房工作的老師復(fù)蘇了一次又一次，這方面的問題還是沒有人著手解決，我急了，查了支原體方面的文獻(xiàn)，有些文章比較麻煩，注射到小鼠體內(nèi)來殺滅支原體，至少這在我們實(shí)驗(yàn)室是不可能使用的方法；有些文章是聯(lián)合使用兩種抗生素來清除支原體，簡(jiǎn)單方便，我就試了這種。

關(guān)于檢驗(yàn)支原體污染，有PCR法、培養(yǎng)法、DNA熒光染色法，我選擇的是DNA熒光染色法，將冰醋酸和甲醇按1:3混合，固定細(xì)胞兩次，每次10分鐘，然后用1μg/ml的Hoechst33258染色20分鐘，紫外激發(fā)，確認(rèn)了我的細(xì)胞中生長(zhǎng)的都有支原體污染。于是我花1.5元買了環(huán)丙沙星（ciprofloxacin）藥片，稀釋成50μg/ml，離心去除淀粉之類的不溶性輔料，加入培基中，稀釋成10μg/ml，跟正常培基一樣用法，打算處理12天后再用Hoechst33258染色驗(yàn)證，對(duì)于污染嚴(yán)重的再用1μg/ml四環(huán)素處理3天。我前兩天試的，每種細(xì)胞分成兩瓶，一瓶用加ciprofloxacin的培基，一瓶不加，對(duì)比明顯，效果不錯(cuò)，但要*消除還需要一些天。我向同學(xué)推薦了這個(gè)方法，有人說自己的培基前段時(shí)間已經(jīng)加了青霉素，但好象沒有效果，支原體沒有細(xì)胞壁，這類干擾細(xì)胞壁合成的抗生素當(dāng)然對(duì)其沒有效果；有的同學(xué)試了，細(xì)胞變得漂亮多了，原來牢牢貼在瓶壁上的黑點(diǎn)也去掉了。呵呵，俺的那些細(xì)胞現(xiàn)在是越長(zhǎng)越標(biāo)致了。下圖是支原體污染細(xì)胞的Hoechst33258染色結(jié)果。

細(xì)胞一旦污染支原體，留之又不能，棄之又可惜，所以總要想一些補(bǔ)救措施，現(xiàn)將我所知道的與各位交流一下。
　　1）化學(xué)藥物——在上面講了很多了
　　2）抗血清處理——特異性多抗
　　3）6－甲基嘌呤脫氧核敢（６-MPDR）有限稀釋法
　　4）激活巨噬細(xì)胞的應(yīng)用——可在24孔板內(nèi)每孔加入1ml飼養(yǎng)細(xì)胞20萬/ml，使形成巨噬細(xì)胞單層，再加入所培養(yǎng)的細(xì)胞。巨噬細(xì)胞培養(yǎng)基中加入四環(huán)素、紅霉素、tylosin或林可霉素等抗生素，可消除污染
　　5）克隆法——有限稀釋法，是將細(xì)胞稀釋接種96孔板中，使每孔接種一個(gè)細(xì)胞，挑取無污染的單個(gè)克隆，此法對(duì)污染較輕的細(xì)胞株有比較好的效果。
　　6）加熱法——利用軟瓊脂技術(shù)，50度加熱滅活細(xì)胞的支原體，再于37度1-3天培養(yǎng)，使瓊脂中的抗生素與支原體進(jìn)一步作用。
　　7）小鼠體內(nèi)傳代除去支原體污染——被支原體污染的特異性雜交瘤細(xì)胞可接種鼠腹腔中傳代，待長(zhǎng)出腫瘤后取出接種小鼠，如此反復(fù)2-3次，可有效清除。這種方法在實(shí)際單抗制備雜交瘤污染時(shí)特別適用。